Inligting

12.7: Splyting van groep II-introne - Biologie

12.7: Splyting van groep II-introne - Biologie


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

  1. Soortgelyke meganisme as dié vir kern pre-mRNA splitsing.
  2. Kan plaasvind deur self-splyting, al is dit onder taamlik kunsmatige toestande.
  3. Reaksie kan omkeerbaar wees (soos die splitsing van groep I-introne), wat lei tot die idee dat hierdie introne transponeerbare elemente kan wees.
  4. Die groep II-selfsplyting kan die evolusionêre voorouer van kern pre-mRNA-splyting wees

I. Meganistiese ooreenkomste vir die splitsing van groep I, groep II en pre-mRNA introne

1. Almal behels transesterifikasie = fosfoesteroordragte. Geen hoë-energiebindings word in die splitsingsproses benut nie; die rangskikking van fosfodiesterbindings word herorganiseer, en as gevolg daarvan word eksons saamgevoeg.

2. Die beginnukleofiel is die 3' OH van 'n guaniennukleotied vir Groep I introne, terwyl dit vir Groep II introne en introne in pre-mRNA die 2' OH van 'n interne adeniennukleotied in die intron is.

3. In alle gevalle word bepaalde sekondêre strukture in die RNA's gebruik om die reaktiewe komponente (bv. ente van eksons en introne) bymekaar te bring. Hierdie sekondêre strukture kan intramolekulêr wees in die geval van self-splysende Groep I- en Groep II-introne, of hulle kan intermolekulêr wees in die geval van pre-mRNA en die snRNA's, bv. dié in die U1, U2, miskien U6 snRNP's.


Kry volledige joernaaltoegang vir 1 jaar

Alle pryse is NETTO pryse.
BTW sal later by die betaalpunt bygevoeg word.
Belastingberekening sal tydens afhandeling gefinaliseer word.

Kry tydsbeperkte of volledige artikeltoegang op ReadCube.

Alle pryse is NETTO pryse.


Voorspelde groep II intron afstammelinge E en F bestaan ​​uit katalities aktiewe ribosime

Groep II-introne is self-splysende, retrotransponeerbare ribosime wat bydra tot geenuitdrukking en -evolusie in die meeste organismes. Die voortdurende identifikasie van nuwe groep II-introne en onlangse bioinformatiese ontledings het voorgestel dat daar nuwe afstammelinge is, wat die groep IIE- en IIF-introne insluit. Omdat die funksie en biochemiese aktiwiteit van groep IIE- en IIF-introne nog nooit eksperimenteel getoets is nie en omdat hierdie introne blykbaar kenmerke te hê wat hulle van ander introne onderskei, het ons besluit om vas te stel of hulle wel self-splysende, katalities aktiewe RNA-molekules was. Vir hierdie doel het ons 'n stel diverse groep IIE- en IIF-introne getranskribeer en bestudeer, wat hul in vitro-selfsplyingsreaktiwiteit, ioniese vereistes en reaksieprodukte kwantitatief karakteriseer. Daarbenewens het ons mutasie-analise gebruik om die relatiewe rol van die EBS-IBS 1 en 2 herkenningselemente tydens splitsing deur hierdie introne te bepaal. Ons wys dat groep IIE en IIF introne inderdaad afsonderlike aktiewe intronfamilies is, met verskillende reaktiwiteite en strukture. Ons wys dat die groep IIE introne uitsluitlik deur die hidrolitiese pad self-splits, terwyl groep IIF introne ook transesterifikasies kan kataliseer. Interessant genoeg neem ons een groep IIF-intron waar wat sirkelvormige intron vorm. Ten slotte, ten spyte van 'n oënskynlike EBS2-IBS2 dupleks in die rye van hierdie introne, vind ons dat hierdie interaksie geen rol speel tydens selfsplyting in vitro nie. Dit is nou duidelik dat die groep IIE- en IIF-introne funksionele ribosime is, met kenmerkende eienskappe wat nuttig kan wees vir biotegnologiese toepassings, en wat kan bydra tot die biologie van gasheerorganismes.

Sleutelwoorde: RNA katalise RNA struktuur nie-koderende RNA splitsing transposon.

Syfers

Geannoteerde sekondêre strukture van geselekteerde...

Geannoteerde sekondêre strukture van geselekteerde groep IIE en IIF introne. Sekondêre strukture van...

Splyting van groep IIE en...

Splyting van groep IIE en IIF introne. Splyting produkte van drie groep IIE ...

Volgorde en identifikasie van geligeerde...

Opeenvolgings en identifikasie van geligeerde eksonspesies. ( A ) Skematiese van die...

Karakterisering van stadige-mobiliteit reaksie produkte.…

Karakterisering van stadige-mobiliteit reaksie produkte. ( A ) Skematiese van die RT-PCR oor...

Kinetika van verteenwoordigende groep IIE...

Kinetika van verteenwoordigende groep IIE en IIF introne. Tydkursusse vir selfsplyningsreaksies...


Abstrak

Groep II intron-gekodeerde proteïene bevorder beide splitsing en mobiliteit van die intron RNA deur die vorming van 'n spesifieke RNA-proteïen kompleks. Die Lactococcus lactis L1.LtrB intron kodeer 'n maturase, LtrA, met omgekeerde transkriptase homologie en spesifieke bindingsaffiniteit vir twee domeine van die intron RNA. Die katalities aktiewe ribonukleoproteïen (RNP) het splitsings-, endonuklease- en omgekeerde transkriptase-aktiwiteit, wat doeltreffende invoeging van die intron-volgorde moontlik maak deur 'n retro-homing-meganisme. Om die samestelling en samestellingsmeganisme van die RNP-kompleks te bepaal, is gesuiwerde LtrA-proteïen ontleed vir sy vermoë om 'n reeks intron-afgeleide RNA's te herken. Ekwilibrium dissosiasiemetings toon dat LtrA twee introniese domeine, DI en DIV, herken. Afsonderlike elektrostatiese vereistes vir binding impliseer egter verskillende maniere van molekulêre herkenning in elke geval. Stoïgiometriese bindingseksperimente toon dat die funksionele RNP-kompleks bestaan ​​uit 'n dimeriese proteïenspesie wat aan 'n enkele intron-RNA gebind is. Beduidende verskille tussen die gemete ewewigsdissosiasiekonstantes en kineties-afgeleide waardes dui daarop dat konformasieveranderinge gepaard gaan met samestelling van die intron-maturase-kompleks, en resultate van beperkte proteolise en fluoressensiespektroskopie-eksperimente dui daarop dat beduidende RNA-afhanklike strukturele veranderinge binne die maturase plaasvind na assosiasie met die intron. Hierdie resultate ondersteun 'n wedersyds geïnduseerde pasmodel waarin RNA-afhanklike konformasieveranderinge binne LtrA stabiele assosiasie van die proteïendimeer met twee onafhanklike introndomeine moontlik maak om 'n funksionele RNP te vorm.

Hierdie werk is ondersteun deur Grant GM22778 van die National Institutes of Health.

Aan wie korrespondensie gerig moet word. Foon: (510) 643-0225. Faks: (510) 643-0080. E-pos: [epos beskermd]

Huidige adres: Departement Molekulêre en Selbiologie en Departement Chemie, Howard Hughes Mediese Instituut, Universiteit van Kalifornië in Berkeley, Berkeley, CA 94720.


GEREEDSKAP VIR IDENTIFIKASIE EN ANALISE VAN GROEP II INTRONS

Die derde afdeling van die databasis bied gereedskap vir identifikasie en ontleding van groep II-introne. 'n Stap-vir-stap gids skets 'n prosedure om introne in genomiese volgordes te identifiseer. Die nuut geïmplementeerde BLAST-soekinstrument stel 'n mens in staat om die naaste intron-verwante in die databasis aan 'n navraagvolgorde op te spoor. Die soektog gee die top 10 treffers terug saam met belynings tussen die navraagvolgorde en ooreenstemmende intron. In die ontleding van 'n kandidaat-intronvolgorde is die naaste familielid baie nuttig om die korrekte grense en sekondêre struktuur te bepaal. Die instrument kan ook afgekapte introne identifiseer wanneer daar 'n skielike diskontinuïteit in die belyning is.

Die grens voorspelling instrument voorspel 5' en 3' intron grense in 'n insette DNA volgorde, gebaseer op volgorde profiele van die intron-ekson aansluitings vir die verskillende subklasse van introns (20). Die instrument maak konserwatiewe voorspellings, sodat grense wat geïdentifiseer is, waarskynlik korrek sal wees, terwyl 5'- en 3'-grense gemis kan word vir introne wat nie die konsensus streng volg nie. 'n Toets vir voorspelling akkuraatheid, met behulp van bekende intron-reekse in die databasis, het korrekte grensvoorspelling vir 72% van introne, verkeerde grensvoorspellings vir 3% en geen voorspelling vir 25% van introne getoon nie. Ongeag die berekeningsuitkoms, moet voorspelde grense bevestig word deur die intron-RNA's in sekondêre strukture in te vou, en/of deur te verifieer dat die teoretiese eksons, wanneer geligeer, vir 'n funksionele proteïen kodeer.

Laastens kan geselekteerde intron-data as FASTA-formaat tekslêers afgelaai word. Aflaaie kan aangevra word vir intronvolgorde, ORF-volgorde (DNA of aminosuur) of intronvolgorde met flankerende volgorde, en kan gekies word volgens filogenetiese klas, genus, spesie, intronnaam of toegangsnommer. Byvoorbeeld, 'n mens kan alle klas ML DNA-volgordes aflaai, almal Bacillus IEP-aminosuurvolgordes, of alle introne teenwoordig in 'n gegewe GenBank-inskrywing.

Ongetwyfeld sal die aantal bekende groep II-introne vinnig aanhou groei namate meer genomiese en metagenomiese monsters in volgorde bepaal word. Met die verhoogde funksionaliteit en nuwe gereedskap wat deur die intron-databasis verskaf word, word gehoop dat die hulpbron sal voortgaan om RNS-navorsers en mikrobioloë te help.


Wat is die verskil tussen Groep I en Groep II Introns?

Groep I-introne is ribosime wat in bakterieë, bakteriofage en eukariotiese organellêre en nukleêre genome voorkom. Groep II-introne is ribosime wat in bakterieë, archaea en eukariotiese organelle voorkom. Boonop inisieer die groep I-introne splitsingsreaksie deur die nukleofiele aanval van die 3'-hidroksiel van 'n guanosien-kofaktor by die 5P-splitsingsplek, terwyl groep II-introne splitsingsreaksie inisieer deur die nukleofiele aanval van die 2' OH van die vertakkingsplek adenosien op die 5′ splitsing aansluiting. Dit is dus die belangrikste verskil tussen groep I en groep II introne.

Verder vorm groep II-introne 'n lariatagtige struktuur tydens die splitsing terwyl groep I-introne nie vorm nie. Dit is dus nog 'n beduidende verskil tussen groep I en groep II introne. Boonop word die groep I-introne in eukariotiese kerngenome aangetref, terwyl groep II-introne nie in eukariotiese kerngenome gevind word nie.

Hieronder lys die verskille tussen groep I en groep II introne in tabelvorm vir vergelyking langs mekaar.


Voorspelling van menslike geenstruktuur

Luciano Milanesi, Igor B. Rogozin, in Guide to Human Genome Computing (Tweede uitgawe), 1998

5.3 Introne

Die introne verteenwoordig die nie-koderende gebied. Daar is verskeie kontekskenmerke in intronreekse. Die belangrikste een is die takpuntsein. Die ander is die hoë frekwensie van poli-G bane naby die 5' einde in baie introne (Nussinov, 1988 Engelbrecht et al., 1992 Solovyev et al., 1994). Dit is moontlik om te let op die afwesigheid van AG in die 10 nukleotiede wat die AG voorafgaan by die intron-ekson aansluiting en die GA en GG nukleotiede in die streek stroomop van intron-ekson grens. Hierdie eienskappe kan gebruik word vir aanvaarder-splitsingsplekherkenning (Senapathy et al., 1990 ).

Een van die potensiële intronfunksies is om die komplekse chromatienstruktuur van proteïenkoderende gene te handhaaf. Daar is byvoorbeeld getoon dat die chromatien in cDNA (sonder introne) aansienlik verskil van dié in die genomiese DNA (Liu) et al., 1995 ).

Vertebrate-gene het introne met 'n wye reeks lengtes, hoewel kort (80–99 nukleotiede) oorheers. Ongeveer 20% van introne is langer as 1600 nukleotiede en die gemiddelde lengte van introne is 1127 nukleotiede (Hawkins, 1988).


DEK46 voer C-tot-U redigering van 'n spesifieke webwerf in mitochondriale uit nad7 introne wat krities is vir intron-splyting en saadontwikkeling in mielies

Die selfsplyting van groep II-introne tydens RNA-prosessering hang af van hul katalitiese struktuur en word beïnvloed deur talle faktore wat die vorming van daardie struktuur deur direkte binding bevorder. Hier rapporteer ons dat C-tot-U redigering by 'n spesifieke posisie in twee nad7 introne is noodsaaklik vir splitsing, wat ook impliseer dat die katalitiese aktiwiteit van nie-funksionele groep II-introne deur redigering herstel kan word. Ons het 'n mielie (Zea mays) mutant, dek46, met 'n gebrekkige pitfenotipe Dek46 kodeer 'n pentatrikopeptied herhaal DYW proteïen uitsluitlik gelokaliseer in mitochondria. Ontledings van die koderende streke van mitochondriale transkripsies het nie verskille in RNA-redigering tussen dek46 mutante en wilde-tipe mielies, maar het getoon dat splitsing van nad7 introne 3 en 4 is ernstig verminder in die mutant. Verder word redigering by nukleotied 22 van domein 5 (D5-C22) van beide introne afgeskaf in dek46. Ons het chimeriese introne gekonstrueer deur D5 van te ruil P.li.LSUI2 met D5 van nad7 intron 3. In vitro splitsingstoetse het aangedui dat die chimeriese intron wat D5-U22 bevat, selfgespleeg kan word, maar die een wat D5-C22 bevat nie. Hierdie resultate dui aan dat DEK46 funksioneer in die C-tot-U redigering van D5-C22 van beide introne, en die U-basis by hierdie posisie is krities vir intron-splyting.

Figuur S1. Koppelingsanalise van dek46.

Figuur S2. Bykomende redigeerwebwerwe in mielies nad7 introne 3 en 4.

Figuur S3. Struktuurmodelle van mielie-mitochondriale intron D5s.

Figuur S4. Evolusie van die D5 van nad7 introne 3 en 4.

Tabel S1. Oligonukleotiede.

Metode S1. Evolusionêre ontleding van die D5 van nad7 introne 3 en 4.

Neem asseblief kennis: Die uitgewer is nie verantwoordelik vir die inhoud of funksionaliteit van enige ondersteunende inligting wat deur die skrywers verskaf word nie. Enige navrae (behalwe ontbrekende inhoud) moet aan die ooreenstemmende outeur vir die artikel gerig word.


Bespreking

Retrotransposisie van 'n groep II intron in L. lactis het gelei tot 'n disproporsioneel hoë aantal gebeurtenisse in die plasmiedskenker, relatief tot die chromosoom. 'n Gedetailleerde karakterisering van integrasieterreine en intronoriëntasie versterk die model wat die groep II-intron verkieslik retrotransponeer in ssDNA-molekules in sy natuurlike L. lactis gasheer (4), en verskaf meganistiese rasionale vir die voorkoms van groep II-introne in plasmiede in natuurlike populasies.

Teikenspesifisiteitsverskille op plasmied relatief tot chromosomale volgordes. Teikenplek-diskriminasie is ietwat laer vir plasmied as vir chromosomale volgordes. Dit is veral waar vir deoksinukleotiede betrokke by basisparing met EBS1 van die RNA, wat die strengste vereis word vir retrotransposisie (Fig. 4) AC) (3, 4). Alhoewel dit onbekend is waarom plasmied-integrasie minder diskriminerend is, is hierdie ietwat ontspanne spesifisiteit waarskynlik 'n belangrike faktor in die voorkeur-integrasie in die plasmied-teiken.

Residu –6C in IBS1 is onveranderlik onder al die plasmied-integrasieplekke (Fig. 4) A en B). Boonop is posisies +1 en +2 (δ′) redelik goed bewaar. Hierdie oorblyfsels is waarskynlik belangrik vir intron-teikenbasisparing om 'n kompleks te vorm wat omgekeerde splitsing kan inisieer (5). Ongeag, hierdie spesifisiteit by –6C en δ′ stem ooreen met die konsep dat die mees diskriminerende kontakte dié is wat die intron-invoegplek flankeer, in ooreenstemming met die groep II RNP wat aktief is op intronlose maar nie intronbevattende allele nie.

Die aard van plasmied-integrante bevoordeel 'n ssDNA-replikasie-gekoppelde retrotransposisie-pad. Retrotransposisie gebeure word rondom pLERIG versprei, met koue kolle in die noodsaaklike replikasiegebied (repD, repE, en pAMβ ori), en brandpunte by 13480, naby die E coli plasmied oorsprong (p15A ori), en by 2134, wat ooreenstem met 'n terrein in domein I van Ll.LtrB (Fig. 5A). Gereelde integrasie by 13480 kan toegeskryf word aan die vermoë van die strek van –6 tot +1 om perfek basispaar met die intron (laat GU-pare toe) en/of aan basisse –23T, –21G, –20A en +5T betrokke by IEP-kontakte word bewaar. Alternatiewelik, hoewel die p15A ori is nie funksioneel vir replikasie in L. lactis, kan 'n proksimale DNA-struktuur integrasie in hierdie streek vergemaklik. Dit kan ook die geval wees vir die hotspot by 2134, wat nie nukleotiede het wat gunstig is vir proteïenkontakte nie, nóg beduidende basisparingsmoontlikhede.

Die integrasieplekke op die skenkerplasmied beklemtoon verskeie belangrike punte wat verband hou met die meganisme van retrotransposisie. Alhoewel die sterk vooroordeel na die antitranskripsie-oriëntasie en nie-getranskribeerde streke (Fig. 4) A en C) as gevolg van seleksie vir Kan R-gebeurtenisse (4) kan wees, dit sluit die gebruik van 'n RNA-teiken (3) met die RIG-seleksiestelsel uit. Hierdie resultate dui aan dat retrotransposisie plaasgevind het deur omgekeerde splyting in DNA, soos vir chromosomale gebeurtenisse.

Die vooroordeel in die rigting van retrotransposisie in die sjabloon vir die sintese van die plasmied-DNA-sintese van die nalopende string is sterker as dié vir chromosomale gebeurtenisse: almal behalwe een invoegplek is op die agterblywende sjabloon van die plasmied (Fig. 4)A en 5A). Omdat retrotransposisie in die voorste string-sjabloon 'n direkte herhaling van die intron genereer, kon hierdie produkte teengeselekteer gewees het deur middel van rekombinasie-gemedieerde uitwissing. Sulke rekombinasie-gebeurtenisse is egter skaars (sien byvoorbeeld ref. 23) en sal dus waarskynlik nie verantwoordelik wees vir die waargenome sloerende-string-vooroordeel nie. In plaas daarvan kan die vooroordeel die intron wat inval van ssDNA-tussenprodukte bevoordeel tydens plasmiedreplikasie weerspieël, gevolg deur omgekeerde transkripsie wat met die 3'-punt van 'n ontluikende Okazaki-fragment geïnisieer word (Fig. 5)B, pad b) (4).

Hierdie model van replikasie-gekoppelde integrasie in ssDNA tydens retrotransposisie word verder ondersteun deur die volgende twee waarnemings. Eerstens, daardie residue wat nodig is vir die afwikkeling van dupleks-DNS (–23T, –21G, –20A, en –15G) (9, 10, 19) is nie hoogs behoue ​​in die plasmied-teikens nie. Tweedens is die plasmied verkies vir retrotransposisie in alle gasheer-skenker kombinasies, en sulke plasmied gebeure is verryk in die volledige afwesigheid van endonuklease (Fig. 1)B, ΔltrB, Endo – skenker). Omdat die endonuklease nodig is vir integrasie in dsDNA, bevoordeel die oorwig van gebeure in sy afwesigheid 'n ssDNA-gerigte pad (Fig. 5)B), in ooreenstemming met die intron se vermoë om in ssDNA te reverse-splas in vitro (4).

Die geneigdheid van Groep II-introne om in plasmiede te woon. Die vooroordeel teenoor retrotransposisie in plasmiede (Fig. 1B) hou waarskynlik verband met die verslag dat ten minste 17 van die 36 gedokumenteerde vollengte groep II-introne wat in bakterieë geïdentifiseer is, op plasmiede eerder as chromosome woon (13), ten spyte van die grootteverskil van hierdie replikons. Alhoewel die aard en wyse van replikasie van die intron-bevattende plasmiede nie bekend is nie, kontrasteer groep II intron verspreiding met dié van bakteriese groep I introne, wat dsDNA binnedring. Geen groep I-introne is op natuurlike plasmiede aangemeld nie, met byna almal wat in chromosome of bakteriofaag-genome woon (24).

Mens moet oop bly vir die moontlikheid dat plasmied-teikening 'n cis-voorkeur weerspieël, veral omdat transkripsie en translasie gekoppel is. Alhoewel hierdie verduideliking nie uitgeskakel is nie, word dit nie maklik versoen met die verhoogde geneigdheid om in plasmiede te integreer wanneer endonuklease afwesig is nie (Fig. 1)B). Interessant genoeg het die meeste bakteriese groep II-introne nie die endonuklease-domein nie (13). Daarom, veral in die afwesigheid van die tweede string-splyting, lyk dit of die intron plasmiedmolekules verkies, wat moontlik ook verantwoordelik is vir die voorkoms van groep II-introne in natuurlike plasmiedpopulasies. Ongeag, die lae teikenspesifisiteit wat hierbo beskryf word, sal geneig wees om promiskue omgekeerde splitsing in plasmiedgenome toe te laat.

Toeganklikheid van die replikasievurk na die intron RNP sal ook 'n belangrike faktor wees vir retrotransposisie via die ssDNA-geteikende pad (Fig. 5, pad b). Terwyl chromosomale replisome in die middel van die sel bly en die gerepliseerde DNA's na elke selpool vrygestel word (25, 26), word plasmiede wat verdelingsisteme ontbreek, ewekansig in sitosoliese ruimtes versprei (27). Omdat pLERIG nie 'n verdelingsisteem het nie, word dit waarskynlik versprei en gerepliseer in die sitosoliese ruimte, waar die intron RNP sal woon, eerder as in die nukleoïed. Ons spekuleer dus dat die enkelstring-sloerstring-sjabloon op hierdie plasmied, soos moontlik ook in sommige natuurlike plasmiede, meer toeganklik is as dié op die chromosoom, en sodoende integrasie bevoordeel. Nog 'n moontlike verklaring vir plasmiedvoorkeur is digtheid van replikasievurke, gegewe die groter aantal vurke per eenheidlengte DNA op plasmiede as op die chromosoom.

Die waarneming van agterlopende string-vooroordeel verskaf wenke oor die meganisme van retrotransposisie tydens konjugasie, waarin die agterlopende string gesintetiseer word in die ontvangersel (28), en kan die gereelde verblyf van die groep II-intron in konjugatiewe plasmiede verduidelik. Dit lyk inderdaad voordelig vir groep II-introne om op plasmiede te woon wat self mobiel is. Sulke plasmiede kan tussen verskillende bakteriese selle beweeg en sodoende die verspreiding van groep II-introne vergemaklik. Die voorkeurteiken van plasmied-replikone, veral konjugatiewe plasmiede, kan 'n gevolg wees van die strategiese keuse van groep II-introne om in 'n bakteriese wêreld onder druk te oorleef om genoomgrootte te minimaliseer.


Trans-splyting van pre-mRNA in plante, diere en protiste

Boodskap-RNA-rypwording in eukariote behels tipies die verwydering van introne van lang voorlopermolekules. 'n Ongewone vorm van RNA-splyting waarin afsonderlike voorloper-transkripsies sekwensies tot die volwasse mRNA bydra deur intermolekulêre reaksies, is nou in 'n aantal uiteenlopende organismes gedokumenteer. In hierdie oorsig, die verskynsel van pre-mRNA trans-splyting is in twee kategorieë verdeel. Die "gesplitste leier" tipe, wat gevind word in protosoë soos tripanosome en laer ongewerwelde diere soos nematodes, lei tot die byvoeging van 'n kort, afgeslote 5' niekoderende volgorde tot die mRNA. Die "diskontinue groep II intron" vorm van trans-splyting, gevind in plant/alge chloroplaste en plant mitochondria, behels die koppeling van onafhanklik getranskribeerde koderingsvolgordes, vermoedelik deur interaksies tussen "introniese" RNA-stukke. Beide kategorieë van trans-splitsing is meganisties soortgelyk aan konvensionele kern pre-mRNA cis-splyting potensiële evolusionêre verhoudings word bespreek.- Bonen, L. Trans-splyting van pre-mRNA in plante, diere en protiste. FASEB J. 7: 40-46 1993.


Kyk die video: Types I and II Self-Splicing Autocatalytic Introns in mRNA (Oktober 2022).