Inligting

Lesing 24: Regulering van geenuitdrukking 2018 - Biologie

Lesing 24: Regulering van geenuitdrukking 2018 - Biologie


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Lesing 24: Regulering van geenuitdrukking 2018

Transkripsieregulasie deur die Mediator-kompleks

Onlangse strukturele vooruitgang gebaseer op verbeterings in elektronmikroskopie metodologie het die generering van hoë-resolusie strukturele modelle van die mediator van RNA polimerase II transkripsie (Mediator) kompleks en van die preinitiasie kompleks (PIC) in die teenwoordigheid van Mediator moontlik gemaak.

Die modulesamestelling van Mediator verander tussen sy werwing na stroomop regulatoriese streke (versterkers of stroomop aktiveervolgorde waar Mediator gebind is aan transkripsiefaktore) en sy werking op kernpromotors saam met PIC-komponente.

Die funksionele wisselwerking tussen Mediator en algemene transkripsiefaktore in PIC-samestelling is nou verwant aan chromatienargitektuur by promotorstreke.

Direkte kontak tussen Mediator en die kernporie-geassosieerde transkripsie-gekoppelde uitvoer (TREX2) kompleks dui daarop dat Mediator funksioneer in geenposisionering in die kernruimte.

Daar is getoon dat bemiddelaar funksioneer in die vestiging van transkripsionele geheue, wat ook bemiddelaarinteraksies met die kernporie behels.

Potensiële terapeutiese teiken en modulasie van Mediator-aktiwiteit in kankers en in swam-aansteeklike siektes beklemtoon die belangrikheid van studies van Mediator-meganismes vir die verbetering van menslike gesondheid.


Эпигенетический контроль экспрессии генов

Terwyl die menslike genoomvolgorde ons begrip van menslike biologie verander het, is dit nie net die volgorde van jou DNA wat saak maak nie, maar ook hoe jy dit gebruik! Hoe word sommige gene geaktiveer en ander word stilgemaak? Hoe word dit beheer? Die antwoord is epigenetika.

Epigenetika was 'n warm onderwerp vir navorsing oor die afgelope dekade aangesien dit duidelik geword het dat afwykende epigenetiese beheer bydra tot siekte (veral kanker). Epigenetiese veranderinge is oorerflik deur seldeling, en kan in sommige gevalle soortgelyk aan mutasies optree in terme van hul stabiliteit. Wat belangrik is, anders as genetiese mutasies, is epigenetiese modifikasies omkeerbaar en het dus die potensiaal om terapeuties gemanipuleer te word. Dit het ook in onlangse jare duidelik geword dat epigenetiese modifikasies sensitief is vir die omgewing (byvoorbeeld dieet), wat 'n groot hoeveelheid openbare debat en navorsing ontketen het. Hierdie kursus sal 'n inleiding gee tot die grondbeginsels van epigenetiese beheer. Ons sal epigenetiese verskynsels ondersoek wat manifestasies van epigenetiese beheer in verskeie organismes is, met 'n fokus op soogdiere. Ons sal die wisselwerking tussen epigenetiese beheer en die omgewing ondersoek en laastens die rol van afwykende epigenetiese beheer in siekte. Alle nodige inligting sal in die lesings gedek word, en aanbevole en vereiste leeswerk sal verskaf word. Daar is geen addisionele vereiste tekste vir hierdie kursus nie. Vir belangstellendes kan addisionele inligting in die volgende handboek verkry word. Epigenetika. Allis, Jenuwein, Reinberg en Caparros. Cold Spring Harbor Laboratory Press. ISBN-13: 978-0879697242 | Uitgawe: 1


Verwysings

Roeder, R. G. & Rutter, W. J. Veelvuldige vorme van DNA-afhanklike RNA-polimerase in eukariotiese organismes. Natuur 224, 234–237 (1969). Vyftig jaar gelede is drie RNA-polimerases uit kerne van eukariotiese selle geïsoleer.

Sentenac, A. Eukariotiese RNA-polimerases. CRC Krit. Ds Biochem. 18, 31–90 (1985).

Fuda, N. J., Ardehali, M. B. & Lis, J. T. Definieer meganismes wat RNA-polimerase II-transkripsie reguleer in vivo. Natuur 461, 186–192 (2009).

Lorch, Y. & Kornberg, R. D. Chromatien-hermodellering vir transkripsie. V. Eerw. Biophys. 50, e5 (2017).

Knezetic, J.A. & Luse, D.S. Die teenwoordigheid van nukleosome op 'n DNA-sjabloon verhoed inisiëring deur RNA-polimerase II in vitro. Sel 45, 95–104 (1986).

Lorch, Y., LaPointe, J. W. & Kornberg, R. D. Nukleosome inhibeer die aanvang van transkripsie, maar laat kettingverlenging toe met die verplasing van histone. Sel 49, 203–210 (1987).

Talbert, P. B., Meers, M. P. & Henikoff, S. Old cogs, new tricks: the evolution of gene expression in a chromatin context. Nat. Ds Genet. 20, 283–297 (2019).

Schones, D. E. et al. Dinamiese regulering van nukleosoomposisionering in die menslike genoom. Sel 132, 887–898 (2008).

Müller, F. & Tora, L. Chromatien- en DNA-volgordes in die definisie van promotors vir transkripsie-inisiasie. Biochim. Biofis. Acta 1839, 118–128 (2014).

Vo ngoc, L., Wang, Y. L., Kassavetis, G. A. & Kadonaga, J. T. Die stiptelike RNA-polimerase II-kernpromotor. Gene Dev. 31, 1289–1301 (2017).

Deaton, A. M. & Bird, A. CpG-eilande en die regulering van transkripsie. Gene Dev. 25, 1010–1022 (2011).

Schübeler, D. Funksie en inligtingsinhoud van DNA-metilering. Natuur 517, 321–326 (2015).

Dynan, W. S. & Tjian, R. Die promotor-spesifieke transkripsiefaktor Sp1 bind aan stroomopvolgordes in die SV40 vroeë promotor. Sel 35, 79–87 (1983). Bewyse word verskaf dat 'n DNA-volgorde-spesifieke transkripsiefaktor Pol II na 'n teikenpromotor kan lei.

Engelke, D. R., Ng, S. Y., Shastry, B. S. & Roeder, R. G. Spesifieke interaksie van 'n gesuiwerde transkripsiefaktor met 'n interne beheergebied van 5S RNA-gene. Sel 19, 717–728 (1980). Bewyse word verskaf dat 'n DNA-volgorde-spesifieke transkripsiefaktor Pol III na 'n teikenpromotor kan lei.

Payvar, F. et al. Gesuiwerde glukokortikoïedreseptore bind selektief in vitro na 'n gekloonde DNA-fragment waarvan die transkripsie deur glukokortikoïede gereguleer word in vivo. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 78, 6628–6632 (1981). 'n Hormoon-sensitiewe DNA-volgorde-spesifieke transkripsiefaktor kan naby sy Pol II-teikenpromotor bind.

Mulvihill, E. R., LePennec, J. P. & Chambon, P. Hoender oviduct progesteroonreseptor: ligging van spesifieke streke van hoë-affiniteitsbinding in gekloonde DNA-fragmente van hormoon-responsiewe gene. Sel 28, 621–632 (1982).

Ptashne, M. & Gann, A. Transkripsionele aktivering deur werwing. Natuur 386, 569–577 (1997).

Kadonaga, J. T., Courey, A. J., Ladika, J. & Tjian, R. Afsonderlike streke van Sp1 moduleer DNA-binding en transkripsionele aktivering. Wetenskap 242, 1566–1570 (1988). 'n Transkripsiefaktor bevat afsonderlike DNA-bindings- en transaktiveringstreke.

Sigler, P. B. Suurblare en negatiewe noedels. Natuur 333, 210–212 (1988).

Fong, Y. W., Cattoglio, C., Yamaguchi, T. & Tjian, R. Transkripsionele regulering deur koaktiveerders in embrioniese stamselle. Tendense Cell Biol. 22, 292–298 (2012).

Lambert, S.A. et al. Die menslike transkripsiefaktore. Sel 172, 650–665 (2018). 'n Inventaris van menslike transkripsiefaktore word verskaf.

Zhu, F. et al. Die interaksielandskap tussen transkripsiefaktore en die nukleosoom. Natuur 562, 76–81 (2018).

Iwafuchi-Doi, M. & Zaret, K. S. Sel lot beheer deur pionier transkripsie faktore. Ontwikkeling 143, 1833–1837 (2016).

Brownell, J.E. et al. Tetrahymena histon asetieltransferase A: 'n homoloog aan gis Gcn5p wat histoon asetilering aan geenaktivering koppel. Sel 84, 843–851 (1996).

Utley, R.T. et al. Transkripsionele aktiveerders rig histoon-asetieltransferase-komplekse na nukleosome. Natuur 394, 498–502 (1998).

Kraus, W.L. & Kadonaga, J.T. p300 en estrogeenreseptor aktiveer saam transkripsie via differensiële verbetering van inisiasie en herinisiasie. Gene Dev. 12, 331–342 (1998).

An, W., Palhan, V. B., Karymov, M. A., Leuba, S. H. & Roeder, R. G. Selektiewe vereistes vir histoon H3 en H4 N termini in p300-afhanklike transkripsionele aktivering vanaf chromatien. Mol. Sel 9, 811–821 (2002).

Banerji, J., Rusconi, S. & Schaffner, W. Uitdrukking van 'n β-globien geen word versterk deur afgeleë SV40 DNA-volgordes. Sel 27, 299–308 (1981).

Benoist, C. & Chambon, P. In vivo volgordevereistes van die SV40 vroeë promotorstreek. Natuur 290, 304–310 (1981).

Furlong, E. E. M. & Levine, M. Ontwikkelingsverbeteraars en chromosoomtopologie. Wetenskap 361, 1341–1345 (2018).

Reiter, F., Wienerroither, S. & Stark, A. Kombinatoriese funksie van transkripsiefaktore en kofaktore. Curr. Mening. Genet. Dev. 43, 73–81 (2017).

Core, L. J. et al. Ontleding van ontluikende RNA identifiseer 'n verenigde argitektuur van inisiasiestreke by soogdierpromotors en -verbeteraars. Nat. Genet. 46, 1311–1320 (2014).

Neil, H. et al. Wydverspreide bidirectionele promotors is die belangrikste bron van kriptiese transkripsies in gis. Natuur 457, 1038–1042 (2009). Die meeste geenpromotors in gis gee aanleiding tot tweerigting-RNA-sintese.

Robson, M. I., Ringel, A. R. & Mundlos, S. Regulatory landscaping: how enhancer-promotor communication is sculpted in 3D. Mol. Sel 74, 1110–1122 (2019).

van Steensel, B. & Furlong, E. E. M. Die rol van transkripsie in die vorming van die ruimtelike organisasie van die genoom. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 20, 327–337 (2019).

Nora, E.P. et al. Ruimtelike verdeling van die regulatoriese landskap van die X-inaktiveringsentrum. Natuur 485, 381–385 (2012).

Sharifi, S. & Bierhoff, H. Regulering van RNA-polimerase I-transkripsie in ontwikkeling, siekte en veroudering. Annu. Ds Biochem. 87, 51–73 (2018).

Haberle, V. & Stark, A. Eukariotiese kernpromotors en die funksionele basis van transkripsie-inisiasie. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 19, 621–637 (2018).

Dergai, O. & Hernandez, N. Hoe om die korrekte RNA-polimerase te werf? Lesse uit snRNA-gene. Tendense Genet. 35, 457–469 (2019).

Reinberg, D. et al. Die RNA-polimerase II algemene transkripsiefaktore: verlede, hede en toekoms. Koue Lente Harb. Simp. Quant. Biol. 63, 83–105 (1998).

Grummt, I. Lewe op 'n planeet van sy eie: regulering van RNA-polimerase I-transkripsie in die nukleolus. Gene Dev. 17, 1691–1702 (2003

Sentenac, A. & Riva, M. Odd RNA polimerases of die A(B)C van eukariotiese transkripsie. Biochim. Biofis. Acta 1829, 251–257 (2013).

Schramm, L. & Hernandez, N. Werwing van RNA-polimerase III na sy teikenpromotors. Gene Dev. 16, 2593–2620 (2002).

Geiduschek, E.P. & Kassavetis, G.A. Die RNA-polimerase III-transkripsieapparaat. J. Mol. Biol. 310, 1–26 (2001).

Engel, C. et al. Strukturele basis van RNA-polimerase I-transkripsie-inisiasie. Sel 169, 120–131.e122 (2017). Hierdie vraestel bied die struktuur van 'n Pol I voor-inisiasie kompleks aan.

Sadian, Y. et al. Strukturele insigte in transkripsie-inisiasie deur gis-RNA-polimerase I. EMBO J. 36, 2698–2709 (2017). Hierdie vraestel bied die struktuur van 'n Pol I voor-inisiasie kompleks aan.

Han, Y. et al. Strukturele meganisme van ATP-onafhanklike transkripsie-inisiasie deur RNA-polimerase I. eLife 6, e27414 (2017). Hierdie vraestel bied die struktuur van 'n Pol I voor-inisiasie kompleks aan.

Schilbach, S. et al. Strukture van transkripsie voor-inisiasie kompleks met TFIIH en Mediator. Natuur 551, 204–209 (2017). Hierdie vraestel bied die struktuur van 'n Pol II-voor-inisiasiekompleks aan wat TFIIH en kernbemiddelaar bevat.

Plaschka, C. et al. Transkripsie-inisiasie komplekse strukture verhelder DNS-opening. Natuur 533, 353–358 (2016).

Plaschka, C. et al. Argitektuur van die RNA-polimerase II-Mediator-kerninisiasiekompleks. Natuur 518, 376–380 (2015). Die driedimensionele argitektuur van 'n Pol II pre-inisiasie kompleks wat kern Mediator bevat, is afgelei.

Kostrewa, D. et al. RNA-polimerase II-TFIIB-struktuur en meganisme van transkripsie-inisiasie. Natuur 462, 323–330 (2009).

Mühlbacher, W. et al. Bewaarde argitektuur van die kern RNA polimerase II inisiasie kompleks. Nat. Commun. 5, 4310 (2014).

Louder, R.K. et al. Struktuur van promotorgebonde TFIID en model van menslike pre-inisiasie komplekse samestelling. Natuur 531, 604–609 (2016).

He, Y., Fang, J., Taatjes, D. J. & Nogales, E. Strukturele visualisering van sleutelstappe in menslike transkripsie-inisiasie. Natuur 495, 481–486 (2013). Hierdie artikel beskryf die argitektuur van 'n Pol II-voor-inisiasiekompleks wat TFIIH bevat.

Hy, Y. et al. Byna-atomiese resolusie visualisering van menslike transkripsie promotor opening. Natuur 533, 359–365 (2016).

Robinson, P.J. et al. Struktuur van 'n volledige Mediator-RNA polimerase II voor-inisiasie kompleks. Sel 166, 1411–1422.e1416 (2016). Hierdie vraestel beskryf die algehele topologie van 'n Pol II-voor-inisiasiekompleks wat TFIIH en Mediator bevat.

Liu, X., Bushnell, D. A., Wang, D., Calero, G. & Kornberg, R. D. Struktuur van 'n RNA-polimerase II-TFIIB-kompleks en die transkripsie-inisiasiemeganisme. Wetenskap 327, 206–209 (2010).

Vorländer, M. K., Khatter, H., Wetzel, R., Hagen, W. J. H. & Müller, C. W. Molekulêre meganisme van promotoropening deur RNA-polimerase III. Natuur 553, 295–300 (2018). Die struktuur van 'n Pol III pre-inisiasie kompleks word beskryf.

Abascal-Palacios, G., Ramsay, E. P., Beuron, F., Morris, E. & Vannini, A. Strukturele basis van RNA-polimerase III-transkripsie-inisiasie. Natuur 553, 301–306 (2018). Die struktuur van 'n Pol III pre-inisiasie kompleks word beskryf.

Kornberg, R. D. Eukariotiese transkripsiebeheer. Tendense Cell Biol. 9, M46–M49 (1999).

Roeder, R. G. Die rol van algemene inisiasiefaktore in transkripsie deur RNA-polimerase II. Tendense Biochem. Wetenskap. 21, 327–335 (1996).

Buratowski, S., Hahn, S., Guarente, L. & Sharp, P. A. Vyf intermediêre komplekse in transkripsie-inisiasie deur RNA-polimerase II. Sel 56, 549–561 (1989).

Chen, H. T. & Hahn, S. Kartering van die ligging van TFIIB binne die RNA-polimerase II-transkripsie-voor-inisiasiekompleks: 'n model vir die struktuur van die PIC. Sel 119, 169–180 (2004).

Bushnell, D. A., Westover, K. D., Davis, R. E. & Kornberg, R. D. Strukturele basis van transkripsie: 'n RNA-polimerase II-TFIIB-kokristal by 4.5 Angstrom. Wetenskap 303, 983–988 (2004).

Sainsbury, S., Niesser, J. & Cramer, P. Struktuur en funksie van die aanvanklik transkriberende RNA-polimerase II-TFIIB-kompleks. Natuur 493, 437–440 (2013).

Knutson, B. A. & Hahn, S. Yeast Rrn7 en menslike TAF1B is TFIIB-verwante RNA-polimerase I algemene transkripsiefaktore. Wetenskap 333, 1637–1640 (2011).

Vannini, A. & Cramer, P. Bewaring tussen die RNA-polimerase I, II en III transkripsie-inisiasie masjinerie. Mol. Sel 45, 439–446 (2012).

Vermeulen, M. et al. Selektiewe ankering van TFIID aan nukleosome deur trimetielering van histoon H3 lisien 4. Sel 131, 58–69 (2007).

D'Alessio, J. A., Wright, K. J. & Tjian, R. Verskuiwing van spelers en paradigmas in selspesifieke transkripsie. Mol. Sel 36, 924–931 (2009).

Levens, D., Baranello, L. & Kouzine, F. Beheer van geenuitdrukking deur DNA-meganika: ontluikende insigte en uitdagings. Biofis. Ds. 8, 259–268 (2016).

Pugh, B. F. & Venters, B. J. Genomiese organisasie van menslike transkripsie-inisiasiekomplekse. PLoS EEN 11, e0149339 (2016).

Andersen, P. R., Tirian, L., Vunjak, M. & Brennecke, J. 'n Heterochromatien-afhanklike transkripsie-masjinerie dryf piRNA-uitdrukking. Natuur 549, 54–59 (2017).

Kassavetis, G. A., Blanco, J. A., Johnson, T. E. & Geiduschek, E. P. Vorming van oop en verlengende transkripsiekomplekse deur RNA-polimerase III. J. Mol. Biol. 226, 47–58 (1992).

Kato, H., Nagamine, M., Kominami, R. & Muramatsu, M. Vorming van die transkripsie-inisiasiekompleks op soogdier-rDNA. Mol. Sel. Biol. 6, 3418–3427 (1986).

Logquist, A. K., Li, H., Imboden, M. A. & Paule, M. R. Promotoropening (smelting) en transkripsie-inisiasie deur RNA-polimerase I vereis nie een van die nukleotied β,γ hidrolise of proteïenfosforilering. Nukleïensure Res. 21, 3233–3238 (1993).

Gokal, P. K., Mahajan, P. B. & Thompson, E. A. Hormonale regulering van transkripsie van rDNA. Vorming van geïnisieerde komplekse deur RNA-polimerase I in vitro. J. Biol. Chem. 265, 16234–16243 (1990).

Schnapp, A. & Grummt, I. Transkripsiekompleksvorming by die muis-rDNA-promotor behels die stapsgewyse assosiasie van vier transkripsiefaktore en RNA-polimerase I. J. Biol. Chem. 266, 24588–24595 (1991).

Feklistov, A. & Darst, S. A. Strukturele basis vir promotor-10 element herkenning deur die bakteriële RNA polimerase σ subeenheid. Sel 147, 1257–1269 (2011).

Zuo, Y. & Steitz, T. A. Kristalstrukture van die E coli transkripsie-inisiasie komplekse met 'n volledige borrel. Mol. Sel 58, 534–540 (2015).

Posse, V. & Gustafsson, C. M. Menslike mitochondriale transkripsiefaktor B2 word benodig vir promotorsmelting tydens die aanvang van transkripsie. J. Biol. Chem. 292, 2637–2645 (2017).

Hillen, H. S., Morozov, Y. I., Sarfallah, A., Temiakov, D. & Cramer, P. Strukturele basis van mitochondriale transkripsie-inisiasie. Sel 171, 1072–1081.e1010 (2017).

Egly, J. M. & Coin, F. 'n Geskiedenis van TFIIH: twee dekades van molekulêre biologie op 'n deurslaggewende transkripsie/herstelfaktor. DNA-herstel (Amst.) 10, 714–721 (2011).

Kim, T. K., Ebright, R. H. & Reinberg, D. Meganisme van ATP-afhanklike promotorsmelting deur transkripsiefaktor IIH. Wetenskap 288, 1418–1421 (2000). Kruisbinding toon dat TFIIH op stroomaf DNA inwerk om die promotor oop te maak.

Holstege, F. C., van der Vliet, P. C. & Timmers, H. T. Opening van 'n RNA-polimerase II-promotor vind in twee afsonderlike stappe plaas en vereis die basale transkripsiefaktore IIE en IIH. EMBO J. 15, 1666–1677 (1996).

Sainsbury, S., Bernecky, C. & Cramer, P. Strukturele basis van transkripsie-inisiasie deur RNA-polimerase II. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 16, 129–143 (2015).

Grünberg, S., Warfield, L. & Hahn, S. Argitektuur van die RNA-polimerase II-voor-inisiasiekompleks en meganisme van ATP-afhanklike promotoropening. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 19, 788–796 (2012). Daar word gevind dat TFIIH 'n translokase bevat wat stroomaf DNA in die Pol II aktiewe sentrum indryf.

Kouzine, F. et al. Globale regulering van promotorsmelting in naïewe limfosiete. Sel 153, 988–999 (2013). Promotor-DNA-opening is 'n gereguleerde gebeurtenis in selle.

Dienemann, C., Schwalb, B., Schilbach, S. & Cramer, P. Promotorvervorming en opening in die RNA-polimerase II-spleet. Mol. Sel 73, 97–106.e104 (2019).

Alekseev, S. et al. Transkripsie sonder XPB vestig 'n verenigde helikase-onafhanklike meganisme van promotoropening in eukariotiese geenuitdrukking. Mol. Sel 65, 504–514.e4 (2017).

Pilsl, M. et al. Struktuur van die inisiasie-kompetente RNA-polimerase I en die implikasie daarvan vir transkripsie. Nat. Commun. 7, 12126 (2016).

Blattner, C. et al. Molekulêre basis van Rrn3-gereguleerde RNA-polimerase I-inisiasie en selgroei. Gene Dev. 25, 2093–2105 (2011).

Milkereit, P. & Tschochner, H. 'n Gespesialiseerde vorm van RNA-polimerase I, noodsaaklik vir die aanvang en groeiafhanklike regulering van rRNA-sintese, word tydens transkripsie ontwrig. EMBO J. 17, 3692–3703 (1998).

Yuan, X., Zhao, J., Zentgraf, H., Hoffmann-Rohrer, U. & Grummt, I. Veelvuldige interaksies tussen RNA-polimerase I, TIF-IA en TAFek subeenhede reguleer pre-inisiasie kompleks samestelling by die ribosomale geen promotor. EMBO Rep. 3, 1082–1087 (2002).

Moir, R. D. & Willis, I. M. Regulering van pol III-transkripsie deur voedingstowwe en stresseinpaaie. Biochim. Biofis. Acta 1829, 361–375 (2013).

Pluta, K. et al. Maf1p, 'n negatiewe effektor van RNA-polimerase III in Saccharomyces cerevisiae. Mol. Sel. Biol. 21, 5031–5040 (2001).

White, R. J. RNA-polimerases I en III, nie-koderende RNA's en kanker. Tendense Genet. 24, 622–629 (2008).

Kornberg, R. D. Bemiddelaar en die meganisme van transkripsionele aktivering. Tendense Biochem. Wetenskap. 30, 235–239 (2005).

Wong, K. H., Jin, Y. & Struhl, K. TFIIH-fosforilering van die Pol II CTD stimuleer mediator-dissosiasie van die preinitiasie-kompleks en promotor-ontsnapping. Mol. Sel 54, 601–612 (2014).

Jeronimo, C. & Robert, F. Kin28 reguleer die verbygaande assosiasie van Mediator met kernpromotors. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 21, 449–455 (2014).

Tsai, K.L. et al. Bemiddelaarstruktuur en herrangskikkings benodig vir holoënsiemvorming. Natuur 544, 196–201 (2017).

Nozawa, K., Schneider, T. R. & Cramer, P. Kernbemiddelaarstruktuur by 3,4 Å strek model van transkripsie-inisiasiekompleks. Natuur 545, 248–251 (2017). Hierdie vraestel bied die kristalstruktuur van die kern Mediator-koaktivatorkompleks aan.

Taatjes, D.J. Transkripsiefaktor-mediator-koppelvlakke: veelvuldig en multivalent. J. Mol. Biol. 429, 2996–2998 (2017).

Jeronimo, C. & Robert, F. Die bemiddelaar kompleks: by die nexus van RNA Polimerase II transkripsie. Tendense Cell Biol. 27, 765–783 (2017).

Eick, D. & Geyer, M. Die RNA-polimerase II-karboksie-terminale domein (CTD)-kode. Chem. Ds. 113, 8456–8490 (2013).

Gnatt, A. L., Cramer, P., Fu, J., Bushnell, D. A. & Kornberg, R. D. Strukturele basis van transkripsie: 'n RNA-polimerase II-verlengingskompleks by 3.3 A-resolusie. Wetenskap 292, 1876–1882 (2001).

Nudler, E. Transkripsie verlenging: strukturele basis en meganismes. J. Mol. Biol. 288, 1–12 (1999).

Vassylyev, D. G., Vassylyeva, M. N., Perederina, A., Tahirov, T. H. & Artsimovitch, I. Strukturele basis vir transkripsie-verlenging deur bakteriële RNA-polimerase. Natuur 448, 157–162 (2007).

Schwinghammer, K. et al. Struktuur van menslike mitochondriale RNA polimerase verlengingskompleks. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 20, 1298–1303 (2013).

Neyer, S. et al. Struktuur van RNA-polimerase I wat ribosomale DNA-gene transkribeer. Natuur 540, 607–610 (2016).

Hoffmann, N. A. et al. Molekulêre strukture van ongebonde en transkriberende RNA-polimerase III. Natuur 528, 231–236 (2015).

Sidorenkov, I., Komissarova, N. & Kashlev, M. Deurslaggewende rol van die RNA:DNA-baster in die prosessiwiteit van transkripsie. Mol. Sel 2, 55–64 (1998).

Vassylyev, D.G. et al. Strukturele basis vir substraatlading in bakteriële RNA-polimerase. Natuur 448, 163–168 (2007).

Wang, D., Bushnell, D. A., Westover, K. D., Kaplan, C. D. & Kornberg, R. D. Strukturele basis van transkripsie: rol van die snellerlus in substraatspesifisiteit en katalise. Sel 127, 941–954 (2006).

Steitz, T. A. & Steitz, J. A. 'n Algemene twee-metaal-ioonmeganisme vir katalitiese RNA. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 90, 6498–6502 (1993).

Cramer, P., Bushnell, D. A. & Kornberg, R. D. Strukturele basis van transkripsie: RNA-polimerase II by 2.8 Angstrom-resolusie. Wetenskap 292, 1863–1876 (2001).

Brueckner, F. & Cramer, P. Strukturele basis van transkripsie-inhibisie deur α-amanitien en implikasies vir RNA-polimerase II-translokasie. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 15, 811–818 (2008).

Landick, R. Die regulatoriese rolle en meganisme van transkripsionele pouse. Biochem. Soc. Trans. 34, 1062–1066 (2006).

Conaway, J. W., Shilatifard, A., Dvir, A. & Conaway, R. C. Beheer van verlenging deur RNA-polimerase II. Tendense Biochem. Wetenskap. 25, 375–380 (2000).

Cheung, A. C. & Cramer, P. Strukturele basis van RNA-polimerase II-terugsporing, arrestasie en heraktivering. Natuur 471, 249–253 (2011).

Kuhn, C. D. et al. Funksionele argitektuur van RNA-polimerase I. Sel 131, 1260–1272 (2007).

Chédin, S., Riva, M., Schultz, P., Sentenac, A. & Carles, C. Die RNA-splytingsaktiwiteit van RNA-polimerase III word bemiddel deur 'n noodsaaklike TFIIS-agtige subeenheid en is belangrik vir transkripsieterminasie. Gene Dev. 12, 3857–3871 (1998).

Bentley, D. L. & Groudine, M. 'n Blok tot verlenging is grootliks verantwoordelik vir verminderde transkripsie van c-myc in gedifferensieerde HL60-selle. Natuur 321, 702–706 (1986).

Eick, D. & Bornkamm, G. W. Transkripsionele arrestasie binne die eerste ekson is 'n vinnige beheermeganisme in c-myc geenuitdrukking. Nukleïensure Res. 14, 8331–8346 (1986).

Gariglio, P., Bellard, M. & Chambon, P. Groepering van RNA-polimerase B-molekules in die 5'-deel van die volwasse β-globien-geen van hen-erytrosiete. Nukleïensure Res. 9, 2589–2598 (1981).

Rougvie, A. E. & Lis, J. T. Die RNA-polimerase II-molekule aan die 5'-punt van die nie-geïnduseerde hsp70 geen van D. melanogaster is transkripsie betrokke. Sel 54, 795–804 (1988).

Strobl, L. J. & Eick, D. Hou terug van RNA-polimerase II by die transkripsie-beginplek bemiddel afregulering van c-myc in vivo. EMBO J. 11, 3307–3314 (1992).

Tome, J. M., Tippens, N. D. & Lis, J. T. Enkelmolekule ontluikende RNA-volgordebepaling identifiseer regulatoriese domeinargitektuur by promotors en versterkers. Nat. Genet. 50, 1533–1541 (2018).

Core, L. & Adelman, K. Promotor-proksimale pouse van RNA-polimerase II: 'n verband van geenregulering. Gene Dev. https://doi.org/10.1101/gad.325142.119 (2019).

Vos, S. M., Farnung, L., Urlaub, H. & Cramer, P. Struktuur van onderbreekte transkripsiekompleks Pol II–DSIF–NELF. Natuur 560, 601–606 (2018).

Kang, J. Y. et al. Strukturele basis vir transkripsie-verlengingsbeheer deur NusG-familie universele reguleerders. Sel 173, 1650–1662.e1614 (2018).

Guo, X. et al. Strukturele basis vir NusA gestabiliseerde transkripsiepouse. Mol. Sel 69, 816–827.e814 (2018).

Saba, J. et al. Die elementêre meganisme van transkripsionele pouse. eLife 8, e40981 (2019).

Yamaguchi, Y., Shibata, H. & Handa, H. Transkripsie verlengingsfaktore DSIF en NELF: promotor-proksimale pouse en verder. Biochim. Biofis. Acta 1829, 98–104 (2013).

Bernecky, C., Plitzko, J. M. & Cramer, P. Struktuur van 'n transkribeerende RNA-polimerase II-DSIF-kompleks onthul 'n multidentaat DNA-RNA-klamp. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 24, 809–815 (2017).

Ehara, H. et al. Struktuur van die volledige verlengingskompleks van RNA-polimerase II met basale faktore. Wetenskap 357, 921–924 (2017).

Palangat, M., Renner, D. B., Price, D. H. & Landick, R. 'n Negatiewe verlengingsfaktor vir menslike RNA-polimerase II inhibeer die anti-arrestasie-transkripsie-splitsingsfaktor TFIIS. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 102, 15036–15041 (2005).

Kettenberger, H., Armache, K. J. & Cramer, P. Argitektuur van die RNA-polimerase II-TFIIS-kompleks en implikasies vir mRNA-splyting. Sel 114, 347–357 (2003).

Vos, S. M. et al. Struktuur van geaktiveerde transkripsiekompleks Pol II-DSIF-PAF-SPT6. Natuur 560, 607–612 (2018). Die struktuur van 'n soogdier, geaktiveerde Pol II verlengingskompleks bied 'n model vir polimerase vrystelling van promotor-proksimale pouse.

Marshall, N. F. & Price, D. H. Suiwering van P-TEFb, 'n transkripsiefaktor wat nodig is vir die oorgang na produktiewe verlenging. J. Biol. Chem. 270, 12335–12338 (1995).

Zhou, Q., Li, T. & Price, D. H. RNA-polimerase II verlengingsbeheer. Annu. Ds Biochem. 81, 119–143 (2012).

Kwak, H. & Lis, J. T. Beheer van transkripsionele verlenging. Annu. Ds Genet. 47, 483–508 (2013).

Sdano, M. A. et al. 'n Nuwe SH2-herkenningsmeganisme werf Spt6 na die dubbelgefosforileerde RNA-polimerase II-skakelaar by transkripsieplekke. eLife 6, e28723 (2017).

Van Oss, S. B., Cucinotta, C. E. & Arndt, K. M. Ontluikende insigte in die rolle van die Paf1-kompleks in geenregulering. Tendense Biochem. Wetenskap. 42, 788–798 (2017).

Shao, W. & Zeitlinger, J. Gepauseerde RNA-polimerase II inhibeer nuwe transkripsie-inisiasie. Nat. Genet. 49, 1045–1051 (2017). Bewyse word aangebied dat promotor-proksimale pouse transkripsie kan reguleer deur inisiasie te onderdruk.

Gressel, S. et al. CDK9-afhanklike RNA-polimerase II-pouse beheer transkripsie-inisiasie. eLife 6, e29736 (2017). Bewyse word aangebied dat promotor-proksimale pouse transkripsie-inisiasie kan reguleer.

Ehrensberger, A. H., Kelly, G. P. & Svejstrup, J. Q. Meganistiese interpretasie van promotor-proksimale pieke en RNAPII-digtheidkaarte. Sel 154, 713–715 (2013).

Brown, S. A., Weirich, C. S., Newton, E. M. & Kingston, R. E. Transkripsionele aktiveringsdomeine stimuleer inisiasie en verlenging op verskillende tye en via verskillende residue. EMBO J. 17, 3146–3154 (1998).

Rahl, P.B. et al. c-Myc reguleer transkripsionele pousevrystelling. Sel 141, 432–445 (2010). 'n Transkripsiefaktor kan transkripsie-verlenging reguleer.

Li, Y., Liu, M., Chen, L. F. & Chen, R. P-TEFb: Vind sy maniere om promotor-proksimaal onderbreek RNA-polimerase II vry te stel. Transkripsie 9, 88–94 (2018).

Smith, E., Lin, C. & Shilatifard, A. Die super verlengingskompleks (SEC) en MLL in ontwikkeling en siekte. Gene Dev. 25, 661–672 (2011).

Sobhian, B. et al. MIV-1 Tat stel 'n multifunksionele transkripsie-verlengingskompleks saam en assosieer stabiel met die 7SK snRNP. Mol. Sel 38, 439–451 (2010).

Yang, Z., Zhu, Q., Luo, K. & Zhou, Q. Die 7SK klein kern-RNA inhibeer die CDK9/cyclin T1 kinase om transkripsie te beheer. Natuur 414, 317–322 (2001).

Nguyen, V. T., Kiss, T., Michels, A. A. & Bensaude, O. 7SK klein kern-RNA bind aan en inhibeer die aktiwiteit van CDK9/cyclin T-komplekse. Natuur 414, 322–325 (2001).

Buratowski, S. Progressie deur die RNA-polimerase II CTD-siklus. Mol. Sel 36, 541–546 (2009).

Bentley, D. L. Koppel mRNA-verwerking met transkripsie in tyd en ruimte. Nat. Ds Genet. 15, 163–175 (2014).

Shilatifard, A., Conaway, R. C. & Conaway, J. W. Die RNA-polimerase II-verlengingskompleks. Annu. Ds Biochem. 72, 693–715 (2003).

Becker, P.B. & Workman, J.L. Nukleosoomhermodellering en epigenetika. Koue Lente Harb. Perspektief. Biol. 5, a017905 (2013).

Clapier, C. R., Iwasa, J., Cairns, B. R. & Peterson, C. L. Meganismes van werking en regulering van ATP-afhanklike chromatien-hermodelleringskomplekse. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 18, 407–422 (2017).

Chen, F. X., Smith, E. R. & Shilatifard, A. Born to run: beheer van transkripsie-verlenging deur RNA-polimerase II. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 19, 464–478 (2018).

Shilatifard, A. Die COMPASS-familie van histoon H3K4-metielases: meganismes van regulering in ontwikkeling en siektepatogenese. Annu. Ds Biochem. 81, 65–95 (2012).

McDaniel, S. L. & Strahl, B. D. Vorm die sellulêre landskap met Set2/SETD2-metilering. Sel. Mol. Lewenswetenskap. 74, 3317–3334 (2017).

French, CA. Kleinmolekule-teiken van BET-proteïene in kanker. Adv. Kanker Res. 131, 21–58 (2016).

Bradner, J. E., Hnisz, D. & Young, R. A. Transkripsionele verslawing in kanker. Sel 168, 629–643 (2017).

Ditlev, J. A., Case, L. B. & Rosen, M. K. Wie is in en wie is uit-komposisionele beheer van biomolekulêre kondensate. J. Mol. Biol. 430, 4666–4684 (2018).

Tolhuis, B., Palstra, R. J., Splinter, E., Grosveld, F. & de Laat, W. Looping en interaksie tussen hipersensitiewe plekke in die aktiewe β-globien lokus. Mol. Sel 10, 1453–1465 (2002).

Papantonis, A. & Cook, P. R. Transkripsiefabrieke: genoomorganisasie en geenregulering. Chem. Ds. 113, 8683–8705 (2013).

Cisse, I. I. et al. Intydse dinamika van RNA-polimerase II-groepering in lewende menslike selle. Wetenskap 341, 664–667 (2013). Lewendige selbeelding visualiseer Pol II-klusters en hul dinamika in menslike kerne.

Buckley, M.S. & Lis, J.T. Beeldvorming van RNA-polimerase II-transkripsieplekke in lewende selle. Curr. Mening. Genet. Dev. 25, 126–130 (2014).

Cho, W.K. et al. Mediator- en RNA-polimerase II-klusters assosieer in transkripsie-afhanklike kondensate. Wetenskap 361, 412–415 (2018). Beeldvorming onthul kernkondensate vir Pol II-transkripsie.

Chong, S. et al. Imaging dinamiese en selektiewe lae-kompleksiteit domein interaksies wat geen transkripsie beheer. Wetenskap 361, ear2555 (2018). Beeldvorming onthul kernkondensate vir Pol II-transkripsie.

Sabari, B.R. et al. Koaktiveerderkondensasie by superversterkers verbind faseskeiding en geenbeheer. Wetenskap 361, ear3958 (2018). Beeldvorming onthul kernkondensate vir Pol II-transkripsie.

Boehning, M. et al. RNA polimerase II groepering deur karboksie-terminale domein fase skeiding. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 25, 833–840 (2018). Beeldvorming onthul kernkondensate vir Pol II-transkripsie.

Hnisz, D., Shrinivas, K., Young, R. A., Chakraborty, A. K. & Sharp, P. A. 'n Faseskeidingsmodel vir transkripsiebeheer. Sel 169, 13–23 (2017). Hierdie artikel bied die hipotese aan dat transkripsie fasegeskeide kernkondensate behels.

Boija, A. et al. Transkripsiefaktore aktiveer gene deur die faseskeidingskapasiteit van hul aktiveringsdomeine. Sel 175, 1842–1855.e1816 (2018).

Nair, S.J. et al. Faseskeiding van ligand-geaktiveerde versterkers lisensieer samewerkende chromosomale versterkersamestelling. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 26, 193–203 (2019).

Kato, M. & McKnight, S. L. 'n Vastetoestand konseptualisering van inligtingoordrag van geen na boodskap na proteïen. Annu. Ds Biochem. 87, 351–390 (2018).

Banani, S. F., Lee, H. O., Hyman, A. A. & Rosen, M. K. Biomolekulêre kondensate: organiseerders van sellulêre biochemie. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 18, 285–298 (2017).

Kwon, I. et al. Fosforilasie-gereguleerde binding van RNA-polimerase II aan veselagtige polimere van lae-kompleksiteit domeine. Sel 155, 1049–1060 (2013).

Lu, F., Portz, B. & Gilmour, D. S. Die C-terminale domein van RNA-polimerase II is 'n multivalente teikenvolgorde wat ondersteun Drosophila ontwikkeling met slegs konsensus-heptads. Mol. Sel 73, 1232–1242.e1234 (2019).

Lu, H. et al. Faseskeidingsmeganisme vir C-terminale hiperfosforilering van RNA-polimerase II. Natuur 558, 318–323 (2018).

Herzel, L., Ottoz, D. S. M., Alpert, T. & Neugebauer, K. M. Splitsing en transkripsie raakbasis: ko-transkripsionele spliceosoomsamestelling en funksie. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 18, 637–650 (2017).

Bregman, D. B., Du, L., van der Zee, S. & Warren, S. L. Transkripsie-afhanklike herverdeling van die groot subeenheid van RNA-polimerase II na diskrete kerndomeine. J. Cell Biol. 129, 287–298 (1995).

Mortillaro, M. J. et al. ’n Hiperfosforileerde vorm van die groot subeenheid van RNA-polimerase II word geassosieer met splitsingskomplekse en die kernmatriks. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 93, 8253–8257 (1996).

Misteli, T. & Spector, D.L. RNA-polimerase II teiken pre-mRNA-splytingsfaktore na transkripsieplekke in vivo. Mol. Sel 3, 697–705 (1999).

Van Treeck, B. & Parker, R. Ontluikende rolle vir intermolekulêre RNA-RNA-interaksies in RNP-samestellings. Sel 174, 791–802 (2018).

Battaglia, S. et al. RNA-afhanklike chromatienassosiasie van transkripsie-verlengingsfaktore en Pol II CTD-kinases. eLife 6, e25637 (2017).

Lewis, J. D. & Tollervey, D. Like lok soos: om RNA-verwerking saam in die kern te kry. Wetenskap 288, 1385–1389 (2000).

Molliex, A. et al. Faseskeiding deur lae kompleksiteitdomeine bevorder spanningskorrelsamestelling en dryf patologiese fibrillering aan. Sel 163, 123–133 (2015).

Castello, A. et al. Omvattende identifikasie van RNA-bindende domeine in menslike selle. Mol. Sel 63, 696–710 (2016).

Ghamari, A. et al. In vivo lewendige beelding van RNA-polimerase II-transkripsiefabrieke in primêre selle. Gene Dev. 27, 767–777 (2013).

Proudfoot, N. J. Transkripsiebeëindiging in soogdiere: stop die RNA-polimerase II-krummel. Wetenskap 352, aad9926 (2016).

Parua, P.K. et al. 'n Cdk9-PP1-skakelaar reguleer die verlenging-terminasie-oorgang van RNA-polimerase II. Natuur 558, 460–464 (2018).

Fukaya, T., Lim, B. & Levine, M. Verbeter beheer van transkripsie bars. Sel 166, 358–368 (2016). Daar word getoon dat 'n versterker twee teikengene kan aktiveer.

Kamieniarz-Gdula, K. & Proudfoot, N. J. Transkripsionele beheer deur voortydige beëindiging: 'n vergete meganisme. Tendense Genet. 35, 553–564 (2019).

Porrua, O., Boudvillain, M. & Libri, D. Transkripsiebeëindiging: variasies op algemene temas. Tendense Genet. 32, 508–522 (2016).

Gibson, B.A. et al. Organisering en regulering van chromatien deur vloeistof-vloeistoffaseskeiding. Voordruk by https://www.biorxiv.org/content/10.1101/523662v1 (2019).Daar word getoon dat histone faseskeiding ondergaan.

Farnung, L., Vos, S. M. & Cramer, P. Struktuur van transkriberende RNA-polimerase II-nukleosoomkompleks. Nat. Commun. 9, 5432 (2018). Krio-elektronmikroskopie verskaf die struktuur van 'n Pol II-nukleosoomkompleks.

Ehara, H. et al. Strukturele insig in nukleosoomtranskripsie deur RNA-polimerase II met verlengingsfaktore. Wetenskap 363, 744–747 (2019).

Kujirai, T. et al. Strukturele basis van die nukleosoomoorgang tydens RNA-polimerase II deurgang. Wetenskap 362, 595–598 (2018). Krio-elektronmikroskopie verskaf die strukture van verskeie Pol II-nukleosoomkomplekse.

Skene, P. J., Hernandez, A. E., Groudine, M. & Henikoff, S. Die nukleosomale versperring tot promotor-ontsnapping deur RNA-polimerase II word oorkom deur die chromatien-hermodelleerder Chd1. eLife 3, e02042 (2014).

Smolle, M. et al. Chromatienhermodelleerders Isw1 en Chd1 handhaaf chromatienstruktuur tydens transkripsie deur histoonuitruiling te voorkom. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 19, 884–892 (2012).

Hsieh, F.K. et al. Histoon chaperone FEIT aksie tydens transkripsie deur chromatien deur RNA polimerase II. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 110, 7654–7659 (2013).

Orphanides, G., LeRoy, G., Chang, C. H., Luse, D. S. & Reinberg, D. FACT, 'n faktor wat transkripsie-verlenging deur nukleosome fasiliteer. Sel 92, 105–116 (1998).

Guo, Y.E. et al. Pol II-fosforilering reguleer 'n oorskakeling tussen transkripsionele en splysiekondensate. Natuur 572, 543–548 (2019).

Chen, F., Gao, X. & Shilatifard, A. Stabiel onderbroke gene geopenbaar deur inhibisie van transkripsie-inisiasie deur die TFIIH-inhibeerder triptolied. Gene Dev. 29, 39–47 (2015).

Titov, D.V. et al. XPB, 'n subeenheid van TFIIH, is 'n teiken van die natuurlike produk triptolied. Nat. Chem. Biol. 7, 182–188 (2011).

Bensaude, O. Inhiberende eukariotiese transkripsie: watter verbinding om te kies? Hoe om sy aktiwiteit te evalueer? Transkripsie 2, 103–108 (2011).

Kwiatkowski, N. et al. Die teiken van transkripsieregulering in kanker met 'n kovalente CDK7-inhibeerder. Natuur 511, 616–620 (2014).

Chao, S.H. et al. Flavopiridol inhibits P-TEFb and blocks HIV-1 replication. J. Biol. Chem. 275, 28345–28348 (2000).

Zhu, Y. et al. Transcription elongation factor P-TEFb is required for HIV-1 tat transactivation in vitro. Genes Dev. 11, 2622–2632 (1997).

Jeruzalmi, D. & Steitz, T. A. Structure of T7 RNA polymerase complexed to the transcriptional inhibitor T7 lysozyme. EMBO J. 17, 4101–4113 (1998).

Hillen, H. S., Temiakov, D. & Cramer, P. Structural basis of mitochondrial transcription. Nat. Struktuur. Mol. Biol. 25, 754–765 (2018).

Zhang, G. et al. Crystal structure of Thermus aquaticus core RNA polymerase at 3.3 Å resolution. Sel 98, 811–824 (1999).

Nudler, E. RNA polymerase active center: the molecular engine of transcription. Annu. Rev. Biochem. 78, 335–361 (2009).

Ray-Soni, A., Bellecourt, M. J. & Landick, R. Mechanisms of bacterial transcription termination: all good things must end. Annu. Rev. Biochem. 85, 319–347 (2016).

Feng, Y., Zhang, Y. & Ebright, R. H. Structural basis of transcription activation. Wetenskap 352, 1330–1333 (2016).

Martinez-Rucobo, F. W. & Cramer, P. Structural basis of transcription elongation. Biochim. Biofis. Acta 1829, 9–19 (2013).

Nogales, E., Patel, A. B. & Louder, R. K. Towards a mechanistic understanding of core promoter recognition from cryo-EM studies of human TFIID. Curr. Mening. Struktuur. Biol. 47, 60–66 (2017).

Khatter, H., Vorländer, M. K. & Müller, C. W. RNA polymerase I and III: similar yet unique. Curr. Mening. Struktuur. Biol. 47, 88–94 (2017).

Kornberg, R. D. The molecular basis of eukaryotic transcription. Proc. Natl Acad. Wetenskap. VSA 104, 12955–12961 (2007).

Engel, C., Neyer, S. & Cramer, P. distinct mechanisms of transcription initiation by RNA polymerases I and II. Annu. Rev. Biophys. 47, 425–446 (2018).

Bieniossek, C. et al. The architecture of human general transcription factor TFIID core complex. Natuur 493, 699–702 (2013).

Cramer, P. et al. Architecture of RNA polymerase II and implications for the transcription mechanism. Wetenskap 288, 640–649 (2000).

Engel, C., Sainsbury, S., Cheung, A. C., Kostrewa, D. & Cramer, P. RNA polymerase I structure and transcription regulation. Natuur 502, 650–655 (2013).

Fernández-Tornero, C. et al. Crystal structure of the 14-subunit RNA polymerase I. Natuur 502, 644–649 (2013).

Jasiak, A. J., Armache, K. J., Martens, B., Jansen, R. P. & Cramer, P. Structural biology of RNA polymerase III: subcomplex C17/25 X-ray structure and 11 subunit enzyme model. Mol. Sel 23, 71–81 (2006).

Werner, F. & Grohmann, D. Evolution of multisubunit RNA polymerases in the three domains of life. Nat. Rev. Microbiol. 9, 85–98 (2011).

Haag, J. R. & Pikaard, C. S. Multisubunit RNA polymerases IV and V: purveyors of non-coding RNA for plant gene silencing. Nat. Ds Mol. Sel Biol. 12, 483–492 (2011).


Kyk die video: Full Operational Lease - hoe werkt het (Oktober 2022).